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Praktikum der Physikalischen Chemie Insbesondere der Kolloidchemie für Mediziner und Biologen

54,99 €

inkl. gesetzl. MwSt., Versandkostenfrei

Beschreibung

Produktdetails

Einband

Taschenbuch

Erscheinungsdatum

01.01.1930

Verlag

Springer Berlin

Seitenzahl

253

Maße (L/B/H)

21/14,8/1,5 cm

Gewicht

349 g

Auflage

4. Auflage 1930

Sprache

Deutsch

ISBN

978-3-642-47241-1

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Einband

Taschenbuch

Erscheinungsdatum

01.01.1930

Verlag

Springer Berlin

Seitenzahl

253

Maße (L/B/H)

21/14,8/1,5 cm

Gewicht

349 g

Auflage

4. Auflage 1930

Sprache

Deutsch

ISBN

978-3-642-47241-1

Herstelleradresse

Springer-Verlag KG
Sachsenplatz 4-6
1201 Wien
AT

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  • I. Das Prinzip des Reihenversuehs.- II. Flockungsschwellenwerte bei kolloiden Lösungen.- 1. Übung. Die Fällung von kolloidem (elektropositivem) Eisenhydroxyd durch Elektrolyte.- 2. Übung Die Fällung von elektronegativem Mastixsol durch Elektrolyte.- 3. Übung Der Farbenumschlag des Kongorubins.- 4. Übung Das Stabilitätsmaximum einer Chlorsilbersuspension.- 5. Übung Der Synergismus der Ionen.- 6. Übung Der Antagonismus der Ionen.- 7. Übung, Wechselseitige Schutz Wirkung und Fällung von Kolloiden.- 8. Übung Hofmeistersche Ionenreihen bei der Eiweißfällung.- III. Einige Versuche über optische Inhomogenität.- 9. Übung. TYNDALLsches Phänomen.- 10. Übung Trübungsmessung (Nephelometrie).- IV. Die Bestimmung der Wasserstoffionen durch Indikatoren.- Die Sonderstellung der H?- und OH?-Ionen.- Maßeinheit und Schreibweise.- 11. Übung. Die Regulatoren oder Puffer.- 12. Übung Die Bestimmung der Wasserstoffzahl mit Indikatoren nach Sörensen (mit Puffern).- 13. Übung Der Salzfehler der Indikatoren.- 14. Übung Der Eiweiß- und Alkaloidfehler der Indikatoren.- 15. Übung Die Bestimmung der Wasserstoffzahl mit Indikatoren ohne Puffer.- 16. Übung Der Säurefehler der Indikatoren.- 17. Übung pH-Messung nach der Indikatorenmethode in einer gefärbten oder getrübten Flüssigkeit nach dem Walpoleschen Prinzip.- 18. Übung Zur Theorie des Farbenumschlages der Indikatoren.- 19. Übung Vereinfachung der Indikatorenmethode ohne Puffer: die Indikator-Dauerreihen.- 20. Übung Der Unterschied zwischen aktueller Azidität und Titrationsazidität.- 21. Übung Titration von Magensaft.- V. Füllungsoptima bei variierter Wasserstoffzahl.- Das Prinzip der h-Reihe mit Salzkonstanz.- 22. Übung. Das Kristallisationsoptimum oder Löslichkeitsminimum der m-Aminobenzoesäure.- 23. Übung Das Fällungsoptimum des Kaseins bei variierter h.- 24. Übung Herstellung von denaturiertem, kolloid gelöstem Serumalbumin und Bestimmung seines Flockungsoptimum.- 25. Übung, a) Die Alkoholempfindlichkeit der Gelatine bei variierter h.- b) Die Alkoholempfindlichkeit des genuinen Serumalbumins bei variierter h.- 26. Übung Das Flockungsoptimum eines Gemisches von Tannin und Gelatine.- 27. Übung a) Das Fällungsoptimum von Lezithin bei variierter h.- b) Das Fällungsoptimum von Lezithin-Eiweiß-verbindung.- VI. Oberflächenspannung.- 28. Übung. Die Steighöhenmethode.- 29. Übung Bestimmung der relativen Oberflächenspannung mit der Tropfenmethode (Stalagmometer nach J. Traube).- 30. Übung Die steigende biologische Wirkung oberflächenaktiver Stoffe in homologen Reihen.- 31. Übung Relative quantitative Analyse eines kapillar aktiven Stoffes.- 32. Übung Nachweis des fett spaltenden Fermentes im Blutserum.- 33. Übung, Bedingt ofberlächenaktive Stoffe; Einfluß der h auf die Oberflächenspannung.- 34. Übung Titration mit einem bedingt oberflächenaktiven Stoff als Indikator.- 35. Übung Bestimmung der Oberflächenspannung des Serums mit der Ringmethode.- VII. Diffusion, Osmose, Filtration.- 36. Übung. Diffusion.- 37. Übung Dialyse.- Elektrodialyse des Serums nach Ettisch.- 38. Übung Die Kompensationsdialyse.- 39. Übung Osmose.- 40. Übung Diffusion durch eine ionensemipermeable Membran.- 41. Übung Ultrafiltration.- 42. Übung Gefrierpunktserniedrigung.- 43. Übung Messung des osmotischen Druckes kolloider Lösungen.- Bestimmung des osmotischen Druckes nach Krogh und Nakazawa.- Ausführung der osmotischen Bestimmung nach Krogh.- VIII. Quellung, Viskosität, Gallertbildung.- 44. Übung, Quellungsmaximum und -minimum der Gelatine.- 45. Übung Bestimmung der inneren Reibung (Viskosität) einer Lösung.- 46. Übung Erstarrungsoptimum und Trübungsoptimum der Gelatine bei variierter h.- IX. Elektrophorese und Elektroendosmose.- 47. Übung. Die elektrische Kataphorese des Hämoglobins.- 1. Herstellung der Mittelflüssigkeit.- 2. Herstellung der Seitenflüssigkeit.- 48. Übung Die quantitative Bestimmung der kataphoretischen Geschwindigkeit.- 49. Übung. Elektrische Kataphorese von roten Blutkörperchen bei Beobachtung im Mikroskop.- 50. Übung Elektrische Endosmose durch eine Tonzelle.- 51. Übung Elektrische Endosmose durch eine Kollodiummembran.- X. Adsorption.- 52. Übung. Übersicht über die Typen der Adsorptionsmittel und Adsorbenda.- 53. Übung Die Verdrängungserscheinungen.- 54. Übung Adsorption der Elektrolyte und der Farbstoffe.- 55. Übung Darstellung aschefreier Kohle.- 56. Übung Adsorption der Elektrolyte von aschefreier Kohle.- Prüfung der Adsorption von Säuren und von Basen.- 57. Übung Hydrolytische Adsorption von benzoesaurem Natrium.- Hydrolytische Adsorption von Natriumchlorid.- 58. Übung Prüfung der Kohle auf adsorbierende Fähigkeit und auf Reinheit.- 59. Übung Kapillarisation.- 60. Übung Adsorption von Farbstoffen an Grenzflächen.- 61. Übung Die Freundlichsche Adsorptionsisotherme.- 62. Übung Trennung und Reinigung der Pankreasfermente nach der Adsorptionsmethode von Willstätter.- XI. Einfluß der h auf die Fermentwirkung.- 63. Übung. Der Einfluß der h auf die Wirkung der Speicheldiastase.- 64. Übung Das Wirkungsoptimum des Pepsins.- 65. Übung Das Wirkungsoptimum der Katalase.- XII. Elektrische Messungen.- XIII. Messung der elektrischen Leitfähigkeit einer Lösung.- 66. Übung.- 67. Übung Leitfähigkeitstitration (Konduktometrische Titration nach Kolthoff).- XIV. Messung elektromotorischer Kräfte.- 68. Übung. Herstellung eines Normalelements.- 69. Übung Der Gebrauch des Kapillarelektrometers.- 70. Übung Herstellung der Kompensationsschaltung zur Messung elektromotorischer Kräfte mit Hilfe eines Meßdrahts.- 71. Übung Messung der EMK des Akkumulators.- 72. Übung Der Gebrauch der Rheostaten mit Vorschaltwiderstand.- 73. Übung Messung mit dem Potentiometer.- 74. Ü Herstellung von Kalomelelektroden und Cl-Konzentrationsketten mit solchen.- 75. Übung Elektrometrische Bestimmung der Cl-Ionen in einerunbekannten Lösung.- 76. Übung Messung eines Diffusionspotentials; seine experimentelle Vernichtung.- 77. Übung Wasserstoffkonzentrationskette mit strömendem Wasserstoff.- 78. Übung. Herstellung und Eichung einer gesättigten Kalomelelektrode.- 79. Übung a) Wasserstoffelektrode mit stehender Gasblase. Messung in Serum.- b) h-Messung im Blut.- 80. Übung Das Diffusionspotential an einer Membran von Pergamentpapier.- 81. Übung Das Diffusionspotential an ausgetrockneten Kollodiummembranen.- 82. Übung Das Membranpotential der Apfelschale.- 83. Übung Die elektrometrische Titration.- 84. Übung Bestimmung der Pufferkapazität des Serums.- 85. Übung Membranpotentiale und Donnansches Ionengleichgewicht.- XV. Oxydations-Reduktionspotentiale.- I. Theoretische Vorbemerkung zu den Oxydations-Reduktions-Potentialen.- 1. Definition der Oxydation und Reduktion.- 2. Die reversiblen Redoxsysteme.- II. Allgemeine technische Anleitungen.- a). Herstellung der Elektroden.- b) Reinigung des Stickstoffs und Wasserstoffs.- c) Elektrodengefäße.- 86. Übung. Das Potential in einem Gemisch von Ferrizyankalium und Ferrozyankalium.- 87. Übung Die Chinhydron-Elektrode.- 88. Übung Reduktive Titration eines reversiblen Farbstoffs mit Natriumthiosulfat (Na2S2O3).- 89. Übung Oxydative Titration eines Leukofarbstoffs.- 90. Übung Das scheinbare Reduktionspotential in nicht reversiblen Systemen, wie Organextrakte, Cystein, Zucker.- XVI. Reaktionskinetik.- 91. Übung. Die Säurespaltung des Rohrzuckers.- 92. Übung Die fermentative Spaltung des Rohrzuckers.- 93. Übung Gasanalytische Bestimmung der Esterasewirkung.- Eichung der Gefäße.- Die Untersuchungstechnik.- 94. Übung Spaltung von razemischem Mandelsäuremethylester durch Taka-Esterase.- 95. Übung Fermentative Esterifizierung.- 96. Übung Zweite Methode der Volum-Eichung von Mikrorespirationsgefäßen.- XVII. Oxydation.- 97. Übung. Zysteinoxydation.- 98. Übung Atmung roter Blutkörperchen.- 99. Übung Demonstration von Wasserstoffsuperoxyd als Zwischenstufe der Reduktion von Sauerstoff.- Molekulargewichte.- Logarithmentafeln.